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當前位置:首頁產(chǎn)品中心生化檢測試劑盒-微量法微量法生化試劑盒BC5285-100T/48SD-乳酸脫氫酶活性檢測試劑盒 微量法

D-乳酸脫氫酶活性檢測試劑盒 微量法
產(chǎn)品簡介:

D-乳酸脫氫酶活性檢測試劑盒 微量法
儲存條件
-20℃
有效期
6個月
單位

英文名稱
D-lactate Dehydrogenase(D-LDH)Activity Assay Kit
檢測方法
微量法 Spectrophotometer/Microplate Reader
規(guī)格
100T/48S

產(chǎn)品型號:BC5285-100T/48S

更新時間:2024-04-19

廠商性質:生產(chǎn)廠家

訪 問 量 :846

服務熱線

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產(chǎn)品介紹

D-乳酸脫氫酶(D-LDH)活性檢測試劑盒說明書

微量法

貨號:BC5285

規(guī)格:100T/48S

產(chǎn)品組成:使用前請認真核對試劑體積與瓶內體積是否一致,有疑問請及時聯(lián)系索萊寶工作人員。

試劑名稱

規(guī)格

保存條件

提取液

液體60 mL×1

2-8℃保存

試劑一

液體7 mL×1

2-8℃保存

試劑二

粉劑×1

-20℃保存

試劑三

液體7 mL×1

2-8℃保存

試劑四

液體20 mL×1

2-8℃保存

標準

液體1 mL×1

2-8℃保存

溶液的配制:

1、 試劑二:臨用前加入0.8 mL蒸餾充分溶解。用不完的試劑分裝保存,-20℃保存4,避免反復凍融;

2、 標準品:20 μmol/mL 酸鈉溶液。

產(chǎn)品說明:

乳酸脫氫酶(Lactate dehydrogenase,LDH)廣泛存在于動物、植物、微生物和培養(yǎng)細胞中,是糖酵解途徑的末端酶,催化丙 酮酸與乳,苯 肼,酸之間的可逆反應,伴隨著NAD+/NADH之間互變。根據(jù)其催化底物-乳酸構型的不同,可分為D-乳酸脫氫酶(D-LDH,EC 1.1.1.28)與L-乳酸脫氫酶(L-LDHEC 1.1.1.27)。

D-LDH催化NAD+氧化D-乳酸生成酸,酸進一步與2,4-二硝* 肼作用生成酸二硝基 苯腙,在堿性溶液中顯棕紅色,顏色深淺與酸濃度成正比。

注意:實驗之前建議選擇2-3個預期差異大的樣本做預實驗。如果樣本吸光值不在測量范圍內建議稀釋或者增加樣本量進行檢測。

自備的儀器用品:

可見分光光度計/酶標儀、水浴鍋/恒溫培養(yǎng)箱、臺式離心機、可調式移液器、微量玻璃比色皿/96孔板、研缽/勻漿器/細胞超聲破碎儀、冰和蒸餾水。

操作步驟:

一、樣本處理可適當調整待測樣本量,具體比例可以參考文獻

 

1. 細菌或培養(yǎng)細胞:先收集細菌或細胞到離心管內,離心后棄上清;按照細菌或細胞數(shù)量(104個):提取液體積(mL)為500~10001的比例(建議500萬細菌或細胞加入1mL提取液),超聲波破碎細菌或細胞(冰浴,功率200W,超聲3s,間隔10s,重復30次);8000g 4℃離心10min,取上清,置冰上待測。

2. 組織:按照組織質量(g):提取液體積(mL)15~10的比例(建議稱取約0.1g組織,加入1mL提取液),進行冰浴勻漿。8000g 4℃離心10min,取上清,置冰上待測。

3. 血清(漿)等其他液體:直接檢測。若有沉淀請離心后取上清待測。

、測定步驟

1、 可見分光光度計/酶標儀預熱30min以上,調節(jié)波長至450nm,分光光度計蒸餾水調零。

2、 標準溶液的稀釋:20μmol/mL酸鈉標準液用蒸餾水進行稀釋得到2、10.5、0.25、0.1250.0625、0.03125、0.015625、0.0078125μmol/mL標準溶液備用

3、 標準液稀釋可參考下表

序號

稀釋前濃度(μmol/mL

標準液體積(µL

蒸餾水體積(µL

稀釋后濃度(μmol/mL

1

20

100

900

2

2

2

100

100

1

3

1

100

100

0.5

4

0.5

100

100

0.25

5

0.25

100

100

0.125

6

0.125

100

100

0.0625

7

0.0625

100

100

0.03125

8

0.03125

100

100

0.015625

9

0.015625

100

100

0.0078125

備注:實驗中每個標準管需10µL標準溶液

4、 1.5mLEP/96孔板按下表步驟加樣

試劑名稱(μL)

測定管

對照管

標準管

空白管

待測樣本

10

10

-

-

標準液

-

-

10

-

試劑一

50

50

50

50

試劑二

10

-

-

-

蒸餾水

-

10

10

20

充分混勻,37℃水浴15min

試劑三

50

50

50

50

充分混勻,37℃水浴15min

試劑四

150

150

150

150

充分混勻,室溫靜置3min,取200μL轉移至微量玻璃比色皿或96孔板中,450nm下測定吸光度,計算ΔA測定=A測定-A對照,ΔA標準=A標準-A空白空白管和標準曲線只需做1-2次,每個測定管需要設一個對照管。

三、D-LDH活性計算

1. 標準曲線的繪制

 

根據(jù)標準管的濃度(x,μmol/mL)和吸光度ΔA標準(y,ΔA標準),建立標準曲線。根據(jù)標準曲線,將ΔA測定(y,ΔA測定)帶入公式計算樣本濃度(x,μmol/mL。

2. D-LDH活性計算

(1) 按樣本蛋白濃度計算

單位的定義:每mg組織蛋白每分鐘催化產(chǎn)生1nmol酸定義為一個酶活力單位。

D-LDH活性U/mg prot= x×V÷Cpr×V樣)÷T×103×F=66.6x÷Cpr×F

(2) 按樣本質量計算

單位的定義:每g組織每分鐘催化產(chǎn)生1nmol酸定義為一個酶活力單位。

D-LDH活性U/g 質量)= x×V÷W÷V樣總×V樣)÷T×103×F=66.67×x÷W×F

(3) 按細菌/細胞數(shù)量計算

單位的定義:每1萬個細菌或細胞每分鐘催化產(chǎn)生1nmol酸定義為一個酶活力單位。

(4) D-LDH活性U/104 cell= x×V÷N÷V樣總×V樣)÷T×103×F=66.67×x×F÷N

(5) 血清(漿)等液體體積計算

單位的定義:每mL血清(漿)等液體每分鐘催化產(chǎn)生1nmol酸定義為一個酶活力單位。

D-LDH活性U/mL=x×V÷V÷T×103×F=66.6x×F

V樣:反應體系中加入的樣本體積,0.01mL;V樣總:加入的提取液體積,1mLT:反應時間,15minCpr蛋白質濃度,mg/mLW:樣本質量,g;N細胞或細菌數(shù)量以萬計;103:單位換算系數(shù),1μmol/mL=103nmol/mL;F:樣本稀釋倍數(shù)。

注意事項

1. 如果測定管吸光值接近空白或ΔA測定過低,可適當加大樣本量后重新測定;如果測定管吸光值超過1.5ΔA測定超過0.4,建議將樣本用提取液適當稀釋后進行測定。注意同步修改計算公式。

實驗實例

1、 0.109g兔腎加入1mL提取液進行冰浴勻漿,按照測定步驟操作,96孔板測得計算ΔA測定=A測定-A對照=0.425-0.298=0.127,帶入標準曲線y=0.5379x+0.0087,計算x=0.220,按樣本質量計算酶活得:

D-LDH活性U/g 質量)=66.67×x÷W×F =134.520 U/g 質量

2、 0.1018g擬南芥加入1mL提取液進行冰浴勻漿,按照測定步驟操作,96孔板測得計算ΔA測定=A測定-A對照=0.236-0.196=0.04,帶入標準曲線y=0.5379x+0.0087,計算x=0.058,按樣本質量計算酶活得:

D-LDH活性U/g 質量)=66.67×x÷W×F =38.109 U/g 質量

3、 500萬細胞加入1mL提取液進行冰浴勻漿,按照測定步驟操作,96孔板測得計算ΔA測定=A測定-A對照=0.225-0.174=0.051,帶入標準曲線y=0.5379x+0.0087,計算x=0.079,按細菌/細胞數(shù)目計算酶活得:

D-LDH活性U/104 cell=0.133×x×F =0.010 U/104 cell

4、 10μL胎牛血清,按照測定步驟操作,96孔板測得計算ΔA測定=A測定-A對照=0.322-0.201=0.121,帶入標準曲線y=0.5379x+0.0087,計算x=0.209,按液體體積計算酶活得:

D-LDH活性U/mL=66.6x×F =13.919 U/mL

參考文獻:

 

[1] Huang P H, Fu L C, Huang C S, et al. The uptake of oligogalacturonide and its effect on growth inhibition, lactate dehydrogenase activity and galactin-3 release of human cancer cells[J]. Food chemistry, 2012, 132(4): 1987-1995.

[2] Huang Y N, Xu G T, You C P. The research progress of the lactate dehydrogenases in lactic acid bacteria[J]. Science and Technology of Food Industry, 2016, (08): 369-373.

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